即用型BCA蛋白定量試劑盒

產品描述

BCA (Bicinchoninic acid) 法是目前應用比較廣泛的蛋白質濃度測定方法。基于雙縮脲反應，即在堿性環境下蛋白質將Cu2+還原成Cu⁺，Cu⁺與BCA試劑形成紫顏色的絡合物，在562 nm處有高的吸光值，該反應產物的量與蛋白質濃度成正比。測定其在562 nm處的吸光值，并與標準曲線對比，即可計算待測蛋白的濃度。該方法快速靈敏、穩定可靠且對不同種類蛋白質變異系數很小。試劑盒中提供了濃度穩定的蛋白標準品用于制作標準曲線。

BCA 蛋白定量試劑盒可用于試管法檢測，也可用于微孔板法檢測。試管法需較大量蛋白樣品(100 μL)和工作液(2 mL)，蛋白樣品與 BCA 工作液的比率為1:20(v/v)，蛋白質測定范圍為20-2000 μg/mL，采用加強法可以檢測到 5 μg/mL；微孔板法操作簡單方便，僅需少量(10-25 μL)的蛋白樣品和工作液(200 μL)，蛋白樣品與工作液的比率為1:20(v/v)或者1:8(v/v），蛋白質測定范圍為 20-2000 μg/mL，采用加強法可以檢測到 5 μg/mL。

我司提供的即用型BCA 蛋白濃度檢測試劑盒，含預配制標準品，無需繁瑣稀釋操作。使用比色皿法可進行 50 次檢測，使用酶標法可進行 500 次檢測。

訂購信息

產品組分

運輸與保存

常溫運輸。4℃保存，有效期12個月。

使用方法

一、配制工作液

1. 配制BCA工作液

(1) 計算所需要的總BCA 工作液體積。總BCA工作液體積=（標準品數量+待測樣品數量）x重復數x每個樣品所需要的BCA 工作液。【注】：試管法檢測時每個樣品加 2.0 mL BCA 工作液，微孔板檢測每個樣品加200 μL BCA 工作液。

(2) 配制BCA工作液：50 體積的BCA 試劑 A 中加入1 體積的BCA 試劑B（A:B=50:1），充分混勻。【注】：BCA工作液裝入密封容器內，室溫條件24h 穩定。

二、檢測方法

1. 試管檢測方法（樣品:BCA工作液=1:20）

(1) 各取100 μL 標準品和待測樣品加入到反應管中。

(2) 每管加入2.0 mL BCA 工作液，混勻。根據待測樣品的濃度范圍選擇孵育時間和溫度。

標準孵育方法：37℃ 孵育30 min 或者室溫2h；增強孵育方法：60℃ 孵育30 min。

【注】：BCA 檢測蛋白濃度，延長孵育時間會加深顏色反應。升高溫度會加快顯色反應，但是溫度升高和時間延長會降低檢測下限，以及降低工作線性范圍。若蛋白濃度很低，可在較高溫度孵育或者適當延長孵育時間。

(3) 冷卻到室溫。在分光光度計上進行檢測，設定波長為 562 nm，在10 min內對所有樣品讀數。【注】：由于BCA 反應達不到真正的反應終點，即使溫度降低至室溫生色反應液會繼續。但是，由于室溫下生色比率相當低，因此若是10 min 內能對所有的樣本進行 562 nm 吸光度的測試，不會導致明顯錯誤。

(4) 根據BSA 標準品的吸光度（減去標準品中空白孔的OD 值即最終的讀數），繪制標準曲線（X-蛋白濃度μg/mL；Y-最終的OD 562nm）。依據標準曲線和樣品的稀釋倍數計算樣品蛋白濃度。

2. 微孔板檢測方法（樣品: BCA工作液=1:20）

(1) 各取10 μL標準品和待測樣品加入到微孔板中。【注】：樣品與工作液比例為1:20，檢測范圍為125-2000 μg/mL。若樣品濃度非常低，可使用25μL 標準品和待檢測樣品進行檢測（即1:8），這時試劑盒的檢測范圍為 20-2000 μg/mL。

(2) 每孔加入200 μL BCA 工作液，槍頭吹打充分混勻。蓋上微孔板，37℃ 孵育30 min。

(3) 冷卻到室溫，在酶標儀上的562 nm 波長范圍處檢測吸光度。

(4) 根據BSA標準品的吸光度（減去標準品中空白孔的OD值即最終的讀數），繪制標準曲線（ X-蛋白濃度μg/mL；Y-最終的OD 562nm）。依據標準曲線和樣品的稀釋倍數計算樣品蛋白濃度。

注意事項

1.         本產品僅限于科學實驗研究使用，不得用于臨床診斷、治療等領域。

2.         對樣品進行適度稀釋，可設置 2 倍、4 倍、8 倍等多個梯度，稀釋液是去離子水或者PBS。

3.         若測定標準曲線時無梯度變化，表明存在BCA法檢測干擾物，詳細的BCA法干擾物質兼容性表詳見官*。

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